坐骨神经损伤模型

小鼠SNI模型是研究周围神经损伤和再生的常用实验模型。通过结扎部分坐骨神经分支，保留另一分支，模拟外周神经损伤疼痛，用于药物筛选和评估。该模型易操作、可重复，能稳定展现机械痛超敏和冷热痛超敏，真实反映神经病理性疼痛特征，助力药物研发。

一、建模方法

小鼠坐骨神经损伤模型可通过物理或化学方法构建。物理方法涵盖挤压（如钳夹、卡压）、离断、冰冻、牵拉及超声定位损伤；而化学方法则是通过坐骨神经周围注射化学药物，引发神经外膜炎。

1. 物理损伤法

钳夹损伤法：

操作：使用止血钳或持针器对坐骨神经施加压力，造成损伤但不切断神经。

应用：适用于观察神经形态与行为变化，模拟轻度至中度神经损伤。

离断损伤法（含手术切断法）：

操作：通过手术器械（如手术剪或刀片）完全或部分切断坐骨神经。

应用：精确控制损伤部位与程度，研究神经断裂后的再生与修复机制，模拟严重神经损伤。

其他物理方法：

包括冰冻损伤法、牵拉损伤法和超声定位损伤法，根据实验需求选择，以模拟不同种类的神经损伤。

2. 化学损伤法

操作：将大剂量或高浓度的化学药物（如青霉素钠、庆大霉素、丙烯酰胺、氯仿等）注射于坐骨神经周围。

应用：利用化学物质对神经的毒性作用，模拟炎症或感染导致的神经病变，破坏神经纤维的结构和功能。

操作过程（以手术切断法为例）

• 麻醉与消毒：使用异氟醚等麻醉剂麻醉小鼠，手术部位消毒。
  
  
• 暴露神经：在后肢股部做切口，暴露坐骨神经。
  
  
• 分离与固定：小心分离坐骨神经，避免损伤周围组织，两端用丝线固定。
  
  
• 施加损伤：根据实验需求，选择钳夹、切断或其他物理方法损伤神经。
  
  
• 缝合与护理：使用显微缝合线缝合皮肤切口，术后给予抗生素预防感染，必要时给予止痛药物。
  
  
• 观察与记录：定期观察小鼠的行为与恢复情况，记录异常。
  

二、模型评价

术后每天评估小鼠活动能力，通过敲击鼠笼观察其反应及活动范围。将小鼠置于安静空笼中适应1小时后，以55~70 dB的木棒敲击声进行测试。评分标准如下：快速活动无异常计5分；较快活动但轻微跛行计4分；活动时间较长且左下肢勾悬计3分；能完成一半以上活动但勾悬计2分；位移不足一半计1分；无明显位移计0分。由3名研究者在同一时间点独立评分，取平均值作为分析数据。

 1.  斜板实验

斜板试验评估小鼠下肢肌肉力量和神经功能，基于其在斜板上保持平衡的能力。坐骨神经损伤影响小鼠在斜板上的表现。试验使用坚固、有摩擦力的斜板，可调节角度。将小鼠置于斜板高端，缓慢增加角度，观察其能否稳定5秒以上，记录最大稳定角度。健康小鼠通常能在60°以上保持稳定，表明坐骨神经功能正常。损伤后，最大稳定角度减小，损伤越重，角度越小。轻度损伤小鼠角度可能在30°至60°间，重度损伤则可能小于30°，甚至无法保持稳定。

2.步态分析

通过观察小鼠行走时的姿势、步伐长度与频率，可以评估其下肢运动功能的恢复情况。利用视频记录及分析软件，能对小鼠行走进行量化评估。此外，将小鼠足部涂上墨水，使其在纸上留下足印，通过分析足印的形状和相互之间的距离，可以进一步判断下肢运动协调性及神经功能恢复的状况。

3.其他

机械痛阈值、热痛阈值

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