关于大小鼠笼盒的更换频率

       针对大小鼠笼盒更换频率，业内意见不一。有人认为频繁更换利于动物，实则不然。理想的更换频率需平衡多方考量，非单纯追求高频。我们即将深入探讨此议题，综合考量动物福利、资源利用等因素，旨在为实验人员提供科学合理的换笼周期指导，确保实验环境既安全又高效。

一、长期不换笼盒对小鼠的危害

长时间未更换笼盒，环境会逐步恶化，显著表现为氨气积聚、湿度失衡及病菌增殖。这些变化一旦超出小鼠的生理承受极限，将直接威胁其健康状况。

尤为值得注意的是“氨”这一化合物，它在常温下是无色且具有强烈刺激性的气体，对小鼠的呼吸道、皮肤及眼睛黏膜构成严重威胁。氨的来源多样，既可由小鼠体内自然生成，也可源自粪便中细菌的代谢活动，特别是在尿液中更为显著。

二、笼盒里的氨是如何产生的

       在微生物的尿素酶催化下，尿液中的尿素与水发生反应，释放出氨和二氧化碳。研究显示，氨浓度过高会直接导致实验动物的鼻部及嗅黏膜受损。即便是在较低浓度的氨环境中长期暴露，也会加剧啮齿类动物的呼吸道感染、角膜模糊及鼻部损伤，并且还可能加剧支原体、博达特氏菌等病原体的侵害。为此，职业健康安全委员会（OHSA）及美国政府工业卫生学家协会（ACGIH）均设定了严格的氨浓度限制，规定最大暴露值不得超过50ppm，或在工作日的8小时内，平均暴露浓度需控制在25ppm以下。

三、换笼注意事项

1.  避免换笼时混淆。为避免换笼时混淆小鼠，换笼操作必须一笼一笼进行。
   
2. 发现小鼠实际数量和笼牌信息不符。如果小鼠实际数量和笼牌信息不符，在笼牌上注明“*月*日 实几只”，并及时通过短信、电话或者邮件形式告知动物拥有者。
   
3. 发现小鼠死亡，信息牌标注日期、死鼠数与剩余数，并表格记录。保留尸体并通知实验者取走或按其实验需求处理（保留则自封袋装、标注信息存-20℃冰箱；不保留则饲养员处理）。鼓励实验者对死因存疑时及时联系兽医进行剖检，以尽快查明原因。
   
4. 镊子务必进行除锈处理，以确保其无锈蚀，从而避免对动物造成潜在的健康风险。在处理新生幼崽时，应首先消毒双手，随后以极其温柔的手法将其转移至清洁的笼盒中，全程需谨慎操作，以防不慎对幼崽造成伤害。
   
5. 完成笼架更换后，立即执行消毒程序。每替换一组笼架，均需使用消毒剂对换笼车、消毒容器、哨兵鼠用勺及双手进行全面喷雾与擦拭消毒。随后，迅速将污损笼盒移出房间，并尽快通过屏障送至清洗消毒区，确保不同笼架间无交叉感染风险。
   
6. 哨兵鼠位置固定，不可随意移动或占用。
   
7. ♀:♂=1:3或1:4的繁殖笼里发现有怀孕雌鼠。在雄雌比例1:3或1:4的繁殖笼里发现有怀孕雌鼠，需及时通知实验者将孕鼠进行分笼处理。
   
8. 逃逸小鼠的处置：
   1）在换笼作业中，务必确保无小鼠逃逸。一旦发生逃逸，应立即捕获，并彻底使用消毒液喷洒全身至湿透状态，随后以灭菌纸轻拭干净，再安全地放回笼盒中。
   （2）若在房间内发现逃逸小鼠，捕获后需执行相同的消毒流程，单独安置于笼盒。同时，在房间内显著位置张贴逃逸小鼠通知，给予48小时认领期，逾期无人认领的小鼠将实施安乐死处理。
   
9. 已用笼盒及水瓶处理 已饲养过小鼠的笼盒及水瓶，无论时间长短，都不再给其他小鼠使用。
   
10. 换笼完毕，记录更换详情，速移脏笼至洗消区。洗消间内清理旧垫料，换新垫料并灭菌，再传回屏障内备用，准备下一轮换笼。
    
11. 有未分笼小仔防逃逸。由于出生10天以上的小仔比较活泼，容易跳出笼盒，换笼时注意动作轻柔，降低声音，也可以借助网格或上盖做遮掩，露出一个小缝转移小仔，防止小仔跳出笼盒逃逸。
    

四、频繁换笼对小鼠的影响

1、饲养密度提升加剧攻击性：高密度饲养环境下，小鼠间的竞争加剧，易诱发更多攻击性行为。

2、空间限制引发行为异常：不足的空间可能迫使小鼠表现出刻板行为、过度自我梳理等异常举动。

3、社会应激影响生理机能：拥挤的居住环境带来高应激水平，进而影响小鼠的繁殖成功率，甚至引发母鼠食仔行为。

4、幼崽生存与成长受阻：过高的繁殖笼饲养密度增加幼崽被踩踏风险，同时限制其正常生长发育，导致体质虚弱。

5、饲养管理挑战加剧：高密度笼盒饲养不仅加大了日常观察难度，使得动物异常难以察觉，还提高了换笼频率，增加了饲养员的工作负担。

五、总结

基于上述分析，频繁换笼对小鼠未必有益，甚至可能带来负面影响。换笼周期的设定应依据氨浓度监测结果，并灵活适应实验的具体需求。重要的是，认识到过高频率的换笼对动物有显著不良影响。因此，我们需全面权衡各因素，以制定科学合理的换笼计划，旨在营造最优化的饲养条件。

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