小鼠常用的注射给药方法（二）

一、尾静脉注射

1.尾静脉注射的重要性

尾静脉注射能够使药物直接进入动物的血液循环系统，避免了口服给药时的首过代谢效应，从而提高了药物的生物利用率。此外，静脉注射还可以精确控制给药剂量和时间，为实验结果的准确性和可靠性提供了有力保障。

2.尾静脉的解剖特点

大小鼠的尾静脉共有3条，其中尾部左右两侧各有一条，背侧有一条。由于左右两侧静脉的角质层较薄且易于固定，因此在实际操作中，这两条静脉常被作为注射的首选。

3. 具体操作步骤

(1)保定与暴露：

使用专门的保定器将小鼠保定，使其尾部充分暴露。

(2)血管扩张：

用45-50℃的温水浸润尾部半分钟或用酒精擦拭，以扩张血管并使表皮角质软化。

（3）持针与进针：

右手持注射器，使针头与静脉平行（小于30°），在距鼠尾尖1/4处（约2-3厘米）进针。此处皮薄易于刺入。

（4）药物注射：

先缓注少量药液，如无阻力且无白色皮丘出现，则表示针头已进入静脉，可正式注入药物。

（5）止血与观察：

注射完毕后，用干棉球按压止血，并观察血管颜色变化以确认注射成功。

4.注意事项

（1）注射位置的选择：

如遇到阻力较大或注射时有隆起，则说明可能注射到了皮下。此时应迅速抽出注射器，并在原注射位点稍上的位置再次尝试。同时，注射开始时应尽可能靠近尾尖（远心端），以便在第一次注射失败后仍有未受损的静脉可用。

（2）血管充盈的保障：

静脉血管的充盈程度是影响注射成功率的关键因素。因此，在注射前应确保血管充盈。一般可通过酒精擦拭等方法来促进血管扩张。

（3）插入深度的控制：

由于小鼠尾静脉很浅，插入深度不宜过深。否则可能刺穿血管壁导致注射失败或药物外渗。

（4）注射剂量的控制：

小鼠和大鼠的单次注射量应分别控制在0.10.2ml/10g和0.30.5ml/100g的范围内。过量注射可能导致动物死亡或实验结果不准确。

二、腹腔注射

1.腹腔注射的应用场景

腹腔注射常用于小鼠麻醉、药物诱导等实验，也适用于不适宜或经胃肠道吸收效率较低的给药情况。此外，对于幼鼠或体重较小的实验动物，腹腔注射也是一种有效的给药方式。

2.腹腔注射的操作步骤

（1）保定动物：

左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，翻转小鼠使小鼠的头部向下，腹部向上。这样由于重力作用，腹腔中的器官会自然倒向胸部，减少损伤大肠、小肠等器官的风险。

（2）进针：

右手持注射器，将注射针头于左下腹部刺入皮下，然后以45度角穿过腹肌。进针时不能太深，感到明显的穿透感即可，以防刺入脏器。进针后注意回抽，如果抽回较吃力且仅空气被回吸，则说明进针成功。

（3）注射药物：

固定针头，缓缓注入药液。进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。

（4）停留与拔出针头：

注射完后不能立马抽出针头，应将针头在腹腔内多停留一段时间，堵住伤口阻止药物外流。随后缓缓拔出针头，并轻微旋转针头以防止漏液。

3.腹腔注射的注意事项

（1）避免刺伤内脏：

针头刺破腹肌后会有落空感，此时针头已进入腹腔，应停止进针以免针头刺入过深损伤内脏。

（2）保持动物头低位：

为使内脏移向上腹，应使动物处于头低位，这样可以进一步减少损伤内脏的风险。

（3）防止漏液：

对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔。注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头以防止漏液。

（4）控制注射剂量：

大鼠单次注射量一般为1.02.0ml/100g，小鼠单次注射量一般为0.10.2ml/10g。过量注射可能导致动物死亡或实验结果不准确。

4.腹腔注射与尾静脉注射的比较

腹腔注射与尾静脉注射各有优缺点。尾静脉注射对初学者来说可能有一定难度，但注射是否成功容易判断，不会对实验结果造成影响。而腹腔注射虽然看似简单，但如果操作不当，很容易造成注射失败且不易被发现，从而直接影响到实验结果。因此，在进行腹腔注射时，操作者需要更加谨慎和细心。

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