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阿尔茨海默症动物模型构建
发布日期:2024-07-19
阿尔茨海默症动物模型构建
阿尔茨海默症(Alzheimer's Disease,简称AD),俗称老年痴呆症,是一种老年期常见的中枢神经系统退行性病变。该病起病隐匿,临床上主要表现为记忆障碍、失语、失用、失认、视空间能力损害、抽象思维和计算力损害、人格和行为改变等全面性痴呆症状。随着病情发展,患者日常生活能力逐渐下降,需要长期治疗。病因至今尚未明确,可能与基因、环境、生活方式等多种因素有关。阿尔茨海默症好发于有家族史的老年人,且女性发病率高于男性。疾病进程通常分为轻度、中度和重度痴呆期,最终可能导致患者昏迷并死于感染等并发症。
一、常见AD小鼠模型
衰老类小鼠模型
1.自然衰老模型
早期AD研究采用自然衰老小鼠模型,即将幼鼠饲养至老年期。此模型简单,能模拟神经元退变、记忆障碍等病理特征。但建模周期长,需超15个月,且老龄小鼠易患其他疾病,健康状况差,死亡率高,群体状态难统一,影响研究稳定性。
2. D-半乳糖诱导衰老模型
D-半乳糖作为加速剂,通过皮下持续注射,促使小鼠细胞加速衰老与凋亡,模拟自然衰老过程。数周后,小鼠展现出学习记忆衰退、行动迟缓等衰老迹象,伴随神经元减少及脑内抗氧化酶SOD活性降低,这些特征与老年小鼠高度相似。
3. 快速衰老模型
SAMP8小鼠模型是老龄化疾病研究的热门选择,6月龄后快速老化,展现学习记忆下降、Aβ沉积等AD特征。其优势在于短饲养周期和显著衰老表现,但繁殖力弱且价格不菲,相较其他小鼠模型成本更高。
Aβ诱导AD模型
Aβ诱导AD模型通过特定脑区注射Aβ片段,模拟AD中Aβ沉积及斑块形成。此模型显著特征包括脑内Aβ积聚、胶质细胞反应及行为认知障碍。然而,其技术复杂,且病理改变多局限于注射点,难以全面反映AD患者脑内Aβ的广泛分布特点,限制了模型在全面模拟AD病理过程方面的应用。
基因编辑小鼠模型
当前AD研究常采用基因编辑小鼠模型,即将人类AD基因转入小鼠,诱发其病理表现。主流模型多基于淀粉样斑块病理(如APP、PSEN1基因),而Tau蛋白聚集模型较少。高引用模型包括APP/PS1、5xFAD、Tg2576及3xTg-AD,这些模型在揭示AD机制中发挥着重要作用。
(AD相关的动物模型统计数据)
二、建模方法
当前AD动物模型聚焦于构建模拟病理、生理及临床特征,关键策略涵盖衰老模拟、基因改造及外源性毒素注入等。特别是,脑内Aβ直接注射模型,通过引入Aβ1-42、Aβ1-40或Aβ25-35至海马或脑室,快速诱导Aβ沉积,形成老年斑。Aβ1-42作为核心病理成分,其核化启动纤维生长,促成典型淀粉样病变。此模型制备方法多样,注射时长灵活,为深入探索AD机制提供了有力工具。
(常用AD动物模型的优缺点比较)
Aβ 1-42诱导AD模型的方法
1、Aβ1-42的配制
- 室温平衡Aβ1-42冻干粉30分钟。
- 在通风橱内,用HFIP溶解Aβ1-42至1mM,分装后真空蒸发HFIP,存于-20°C。
- 使用前,将Aβ1-42重悬于DMSO至5mM。
- 实验时,根据需求用生理盐水或脑脊液稀释至工作浓度。
2、小鼠单侧侧脑室埋管
小鼠麻醉固定后,头部消毒并暴露颅骨,去除结缔组织。通过脑立体定位仪定位前囟门,确定侧脑室套管位置并钻孔植入套管,用骨胶和牙科水泥固定。小鼠苏醒后单笼饲养。注射时拔出内芯,连接PE管和微量注射泵,以0.5μL/min速度注入药物。
3、行为学任务
任务开始前对各组已完成套管埋置的小鼠注射生理盐水或者Aβ1-42,微量注射泵注射速度为0.5μL/min,注射2μL。注射完后停针5min防止注射液倒流,然后放回内芯,锁紧螺帽。自发转换Y迷宫实验和新异位置识别任务:小鼠注射药物10min后,开始自发转换Y迷宫实验和新异位置识别任务的检测。
三、验证
理想的AD模型需具备三大核心要素:
神经病理学特征的高度相似性:模型应展现出阿尔茨海默病(AD)特有的两大神经病理学标志——老年斑(SP)和神经原纤维缠结(NFP),这是评估模型有效性的基础。
病理生理变化的显著模拟:模型需能模拟AD的关键病理生理过程,包括神经元的进行性死亡、神经突触连接的显著减少以及星形胶质细胞的异常增生等,这些变化是AD疾病进展的重要标志。
认知功能障碍的明确表现:除了病理学上的相似性外,模型还应在行为学层面表现出与AD患者相似的认知功能衰退,如学习记忆能力下降、空间定向障碍等,这是评估模型能否有效模拟AD临床症状的关键。
AD研究中,小鼠模型是关键,助力生物学机制探索、靶点验证及药物筛选。转基因与非转基因模型均能模拟AD病理。尽管遗传与生化研究深入,但鉴于AD的认知障碍核心,评估干预效果终需聚焦于学习与记忆测试,确保治疗策略能有效改善这一核心症状。
AD小鼠模型行为分析常用的测试实验包括:情境恐惧条件反射、放射臂水迷宫和Morris水迷宫。
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