实验动物体液采集方法

       在科学实验研究中，精准而高效的体液采集是理解动物生理病理变化的关键。从血液的细密分析到尿液、胸腹水及分泌液的全面探索，每一种采集方法都承载着揭示生命奥秘的重任。本推文将带您深入了解实验动物体液采集的多样化技巧。

1. 血液采集

1.1 眼眶后静脉丛取血

可采血量：每次约取0.2-0.3mL血，适合重复操作。

• 先局部麻醉小鼠采血侧眼球，减少其痛苦。
  
• 左手轻压颈部促眼球外凸，眼眶静脉丛充血。
  
• 右手持毛细管，精准刺入眼眶底，微捻使其深入静脉丛采血。
  
• 血满即松压拔管，棉球按压止血。
  

1.2 鼠尾采血

可采血量：0.1-0.2 mL， 适用于少量多次采血。

• 用无菌手术刀或锋利的剪刀，快速截取小鼠尾尖。
  
• 采血结束后使用无菌棉球按压伤口处止血。
  

1.3 隐静脉采血

可采血量：一般为0.2-0.5ml， 具体采血量还需根据实验需求、小鼠的体重和健康状况等因素来确定。

隐静脉采血，作为少量血液采集的常用手段，无需对实验动物进行麻醉处理。

• 在确保动物稳固固定后，轻轻剃除采血部位的毛发，以充分暴露采血点。
  
• 使用采血针精准刺入该点，血液即可顺利流出供采集。
  
• 采血完毕后，迅速以无菌干棉球施压于采血点上方，实现有效止血。
  

1.4 心脏采血

可采血量：一般为0.5-1 mL，适用于需血量大的实验终末期的动物采血，此方法需在麻醉状态下进行。

• 将小鼠胸腔部调整至凸出并展平状态，左手轻握其腹部皮肤作为稳定支点。
  
• 右手执1mL注射器，针尖斜面朝上，以10-20°角精准刺入剑突与左肋弓交汇点。
  
• 一旦见血，稳住注射器，缓慢匀速后拉，同时确保针芯与血液面维持约0.1mL负压间隙，直至完成所需采血量。
  

1.5 腹主动脉采血

可采血量：一般为0.8-1.2 mL，此方法需在麻醉状态下进行。

动物麻醉后，解剖暴露腹主动脉的方式采集血液，取血量大、不易溶血，适用于多项目检测，不损伤器官，不会出现因操作不当造成气栓与瘀血等，有利于病理组织学检查。

1.6 颌下静脉采血

采血量：一般为0.2-0.5 mL，面部采血一般无需麻醉。

待动物固定，确定采血点后使用采血针迅速刺入，获得血液样本。得到所需血量后，用无菌干棉球压迫止血。

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