大鼠的基本实验操作技术（二）

一、麻醉与阵痛

1. 吸入麻醉法

乙醚作为麻醉药，可通过呼吸道吸入产生麻醉效果。将大鼠置于含浸润乙醚棉球的麻醉箱内，动物会先兴奋后抑制，直至麻醉状态（表现为四肢松弛、角膜反射迟钝、皮肤无痛感），此时可进行手术。注意乙醚易燃，应在通风橱中操作并防火。

2. 注射麻醉法

大鼠常采用腹腔注射麻醉，药物包括戊巴比妥钠（40～50mg/kg）、硫喷妥钠（40mg/kg）、氨基甲酸乙酯（1000～2000mg/kg）和氯胺酮（75～90mg/kg）。注射时先给总量的2/3，视反应调整，避免麻醉过深致死。

3. 局部麻醉

局部麻醉通过阻滞神经传导实现麻醉与镇痛，包括：(1)表面麻醉：用0.5%-1%利多卡因涂敷于黏膜表面；(2)区域阻滞：在手术区周围注射0.5%-1%普鲁卡因；(3)神经干阻滞：在神经干周围注射0.5%-1%利多卡因；(4)局部浸润：沿切口注射0.25%-0.5%利多卡因或0.5%-1%普鲁卡因。

二、安死术

1.颈椎脱臼法

将大鼠置于粗糙平面上，以左手拇指与食指稳固地按压其头部，同时右手紧握鼠尾向后猛拉，致使脊髓与脑髓断裂，导致大鼠迅速死亡。此方法适用于体重200g以下的大鼠。

2. 急性失血法

大鼠麻醉后，可采用股动脉放血方法使大鼠急性失血死亡。

3. 过量麻醉法

过量注射麻醉剂（常用剂量的10-20倍）或使动物吸入过量的乙醚、异氟烷等麻醉气体，均可导致动物死亡。

4. CO2致死法

将大鼠置于容器内，通入CO2使其逐渐昏迷至死。CO2安全环保，有专用处死设备。

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